CRISPR/Cas系统是一种高效的基因编辑工具,被广泛应用于基因编辑、基因治疗及核酸检测等领域。CRISPR/Cas系统由CRISPR基因座、Cas效应蛋白及向导RNA组成,有着强大的家族体系,成员主要分为两类,第1类(第I、III、IV型)利用多种Cas效应蛋白,而第2类(第II、V、VI型)则需要单一的Cas效应蛋白。其中颇受关注的Cas9(II型)、Cas12a(V型)和Cas13a(VI 型 )系统有很大的区别(见图1-2)。

图1 CRISPR/Cas系统原理对比图

图2 常用的CRISPR/Cas系统对比
应用较早的CRISPR/Cas9系统,是通过利用sgRNA(由crRNA和tracrRNA 组成)特异性识别靶序列,引导Cas9核酸内切酶对靶序列的PAM上游3 位核苷酸外侧进行切割,造成靶位点DNA双链断裂来发挥编辑作用的,其靶基因为dsDNA,切割类型为平末端,大小为1,000-1,600个氨基酸,被广泛用于哺乳动物的基因编辑[1]。
与之相比,CRISPR/Cas12a(即Cpf1)系统只需要crRNA引导,体积小,只有1,200-1,300个氨基酸,切割位点远离识别位点,并形成粘性末端,更易递送至细胞内,实现基因组连续多次和更加精准地编辑。通过在crRNA的引导下识别含PAM的靶DNA,靶DNA解链后,靶标链与crRNA形成Rloop(RNA-DNA杂合链),释放出Cas12a中RuvC的活性位点;非靶标链被RuvC切割,使靶标DNA解旋,接着靶DNA的靶标链也被RuvC切割;当完成顺式切割后,若有ssDNA进入,都会被RuvC反式切割,其反式切割活性已应用于高灵敏度核酸检测中,对疾病的检测与诊断发挥重要作用[2-3]。
较上述两种系统,CRISPR/Cas13a系统中Cas13a体积最小,约930个氨基酸,而且靶基因为RNA,首先crRNA识别靶RNA,结合形成双链RNA。导致Cas13a与crRNA的构象变化,使两个HEPN结构域(切割活性区域)逐渐靠近,成功激活Cas13a蛋白的RNA酶切活性,其中Cas13蛋白不仅能切割靶RNA,还能切割游离的任意单链RNA。处于一种酶促“激活”状态,这种特性在限制疾病传染,缩小感染范围有很大潜能[4]。
综上,三种系统在向导RNA、PAM、目标基因的类型等方面均存在差异,目前应用相对广泛的是Cas9,而Cas12a和Cas13a由于体积较小,作用目标基因不同等特性,影响力也在逐步提升,加之越来越多的效应蛋白被发掘,CRISPR系统终将在基因编辑、疾病诊断等领域大放光彩。
参考文献
[1] Doudna, Jennifer A , Charpentier, et al. The new frontier of genome engineering with CRISPR-Cas9[J]. Science, 2014, 346(6213): 1258096.
[2] 周晨晨, 刘写写, 谢海华. CRISPR家族新成员: CRISPR-Cpf1*[J]. 生物化学与生物物理进展, 2018, 45(6): 585-592.
[3] Bayat H, Modarressi M H, Rahimpour A. The conspicuity of CRISPR-Cpf1 system as a significant breakthrough in genome editing. Current Microbiology, 2018, 75 (1): 107 - 115.
[4] Akshay T , Alexandra E S , Knott G J , et al. RNA Binding and HEPN-Nuclease Activation Are Decoupled in CRISPR-Cas13a[J].Cell Reports, 2018, 24(4):1025.